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磷酸丙糖异构酶(Triose-phosphateisomerase,TPI)--分光光度法
磷酸丙糖异构酶(Triose-phosphateisomerase,TPI)--分光光度法
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磷酸丙糖异构酶(Triose-phosphateisomerase,TPI)--分光光度法
市场价格
经销商客户: ¥1375.0
实验室客户: ¥1875.0
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文件与质量管理

商品描述

商品属性

注意:正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。

测定意义

植物叶绿体中磷酸丙糖异构酶是光合作用中参与calvin循环的重要酶。作用于磷酸甘油醛和磷酸二羟丙酮之间的转化,磷酸二羟丙酮能快速透过叶绿体的包膜进入细胞质,并在其中逐步转化为蔗糖。

测定原理

磷酸丙糖异构酶将磷酸二羟丙酮转化为3-磷酸甘油醛,3-磷酸甘油醛与NAD在3-磷酸甘油醛脱氢酶的作用下生成3-磷酸甘油酸和NADH,340nm处的吸光度变化反映了磷酸丙糖异构酶的活性的高低。

自备实验用品及仪器

天平、低温离心机、研钵、震荡仪、紫外分光光度计、1 mL石英比色皿。

试剂组成和配制

提取液一:液体50mL×1瓶,4℃保存。

提取液二:液体50mL×1瓶,4℃保存。

试剂一:液体30mL×1瓶,4℃保存。

试剂二:粉剂×1瓶,-20℃避光保存。临用前加5mL蒸馏水充分溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。

试剂三:粉剂×1瓶,-20℃避光保存。临用前加5 mL蒸馏水充分溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。

试剂四:粉剂×1瓶,-20℃避光保存。临用前加5 mL蒸馏水充分溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。

酶液提取

①总TPI酶提取:建议称取约0.1g样本,加入1mL提取液一,冰浴匀浆后超声破碎(冰浴,200W,破碎3s,间歇7s,总时间1min),然后4℃,8000g离心10min,取上清测定。

②胞浆和叶绿体TPI酶的分离:按照植物组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g样本,加入1mL提取液一),冰浴匀浆后于4℃,200g离心5min,弃沉淀,取上清在4℃,8000g离心10min,取上清用于测定胞浆TPI酶活性,取沉淀加1mL提取液二,震荡溶解后超声破碎(冰浴,200W,破碎3s,间歇7s,总时间1min),然后4℃,8000g离心10min,取上清测定叶绿体中TPI酶活性。

建议测定总TPI酶活性,按照步骤①提取粗酶液,若需要分别测定胞浆和叶绿体中的TPI,则按照步骤②提取粗酶液。

测定操作

分光光度计预热30min,调节波长至340nm,蒸馏水调零。

取1mL石英比色皿,依次加入600μL试剂一,100μL试剂二,100μL试剂三,100μL试剂四,100μL粗酶液,充分混匀,记录340nm处10s的吸光值A1和310s的吸光值A2,△A=A2-A1

计算公式

(1)按照样本蛋白浓度计算

酶活单位定义:每毫克组织蛋白每分钟生成1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。

TPI(nmol/min /mg prot)= ΔA÷(ε×d)×V反总÷(V样×Cpr) ÷T=321.54×ΔA÷Cpr

(2)按照样本质量计算

酶活单位定义:每克组织每分钟生成1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。

TPI(nmol/min /g 鲜重)= ΔA÷(ε×d)×V反总÷(W ×V样÷V样总) ÷T=321.54×ΔA÷W

V反总:反应体系总体积,1mL;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103 L / mol /cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.1mL;V样总:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,5 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g

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